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當(dāng)前位置:首頁產(chǎn)品中心生化檢測試劑盒-微量法微量法生化試劑盒BC5395-100T/48S半胱氨酰亞砜裂解酶活性檢測試劑盒 微量法

半胱氨酰亞砜裂解酶活性檢測試劑盒 微量法
產(chǎn)品簡介:

半胱氨酰亞砜裂解酶活性檢測試劑盒 微量法
有效期
6個(gè)月
儲(chǔ)存條件
2-8℃
單位

英文名稱
Cysteinyl Sulfoxide Lyase (CSL)Activity Assay Kit
檢測方法
微量法 Spectrophotometer/Microplate Reader
規(guī)格
100T/48S

產(chǎn)品型號(hào):BC5395-100T/48S

更新時(shí)間:2024-04-19

廠商性質(zhì):生產(chǎn)廠家

訪 問 量 :1020

服務(wù)熱線

010-50973130

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產(chǎn)品介紹

半胱氨酰亞砜裂解酶(CSL)活性檢測試劑盒說明書

微量法

貨號(hào):BC5395

規(guī)格:100T/48S

產(chǎn)品內(nèi)容:使用前請(qǐng)認(rèn)真核對(duì)試劑體積與瓶內(nèi)體積是否一致,有疑問請(qǐng)及時(shí)聯(lián)系索萊寶工作人員。

試劑名稱

規(guī)格

保存條件

提取液

液體60 mL×1

2-8℃保存

試劑一

液體1.5 mL×1

2-8℃保存

試劑二

粉劑×1

2-8℃保存

試劑三

液體3 mL×1

2-8℃保存

試劑四

液體3 mL×1

2-8℃保存

試劑五

液體12 mL×1

2-8℃保存

標(biāo)準(zhǔn)品

液體1 mL×1

2-8℃保存

溶液的配制:

1、 試劑二:試劑放于試劑瓶內(nèi)EP管中。臨用前加入4 mL蒸餾水溶解,-20分裝可保存4周,避免反復(fù)凍融

2、 試劑二工作液:臨用前根據(jù)樣本量將試劑二用蒸餾水稀釋5000倍,現(xiàn)用現(xiàn)配。

1、 標(biāo)準(zhǔn)品:20μmol/mL *酸鈉標(biāo)準(zhǔn)液。

2、 0.625μmol/mL*酸鈉標(biāo)準(zhǔn)液的配制:臨用前取30μL20μmol/mL 標(biāo)準(zhǔn)液EP管中,加入930μL蒸餾水充分溶解,配制成0.625μmol/mL*酸鈉標(biāo)準(zhǔn)液備用。

產(chǎn)品說明:

半胱氨酰亞砜裂解酶,簡稱蒜酶,又名蒜氨酸酶。半胱氨酰亞砜裂解酶幾乎存在于所有蔥屬植物中,如大蒜,洋蔥,韭菜等。蒜氨酸酶存在于液泡內(nèi),其天然底物蒜氨酸存在于細(xì)胞質(zhì)中;蒜氨酸酶與蒜氨酸接觸并催化產(chǎn)生蒜素和順、反式阿霍烯并生成*酸和氨等副產(chǎn)物,也是大蒜等植物辛辣氣味的主要來源。

半胱酰胺亞砜裂解酶可以催化S-甲基-L-半胱*酸亞砜生成*酸。*酸可與2,4-二硝 * 肼反應(yīng)生成2,4-二硝*腙,在堿性條件下顯棕紅色;測定505nm吸光度的變化,即可計(jì)算CSL酶活性。

注意:實(shí)驗(yàn)之前建議選擇2-3個(gè)預(yù)期差異大的樣本做預(yù)實(shí)驗(yàn)。如果樣本吸光值不在測量范圍內(nèi)建議稀釋或者增加樣本量進(jìn)行檢測。

需自備的儀器和用品:

可見分光光度計(jì)/酶標(biāo)儀、水浴鍋/恒溫培養(yǎng)箱、臺(tái)式離心機(jī)、可調(diào)式移液器、微量玻璃比色皿/96孔板、研缽/勻漿器、蒸餾水和冰。

操作步驟:

 

一、樣本處理(可適當(dāng)調(diào)整待測樣本量,具體比例可以參考文獻(xiàn))

1. 組織樣本:按照組織質(zhì)量(g):提取液體積(mL)15~10的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL提取液),進(jìn)行冰浴勻漿,4℃浸提30分鐘。12000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。

2. 液體樣本:直接測定。(若溶液呈現(xiàn)渾濁,則離心取上清后再測定)。

二、測定步驟

1、 可見分光光度計(jì)/酶標(biāo)儀預(yù)熱30min以上,調(diào)節(jié)波長至505nm,可見分光光度計(jì)用蒸餾水調(diào)零。

2、操作表:(在1.5mLEP管或者96孔板中加入下列試劑)

試劑名稱(μL

測定管

對(duì)照管

標(biāo)準(zhǔn)管

標(biāo)準(zhǔn)空白管

樣本

20

20

-

-

標(biāo)準(zhǔn)品

-

-

20

-

試劑一

20

-

-

-

試劑二工作液

20

20

20

20

蒸餾水

-

20

20

40

混勻后,37℃反應(yīng)30min

試劑三

20

20

20

20

試劑四

20

20

20

20

混勻后,37℃反應(yīng)30min

試劑五

100

100

100

100

混勻,室溫放置10min,在505nm波長處測各管吸光度。記作A測定A對(duì)照,A標(biāo)準(zhǔn)A標(biāo)準(zhǔn)空白。?A測定=A測定-A對(duì)照?A標(biāo)準(zhǔn)=A標(biāo)準(zhǔn)-A標(biāo)準(zhǔn)空白。(標(biāo)準(zhǔn)管和標(biāo)準(zhǔn)空白管只需做1-2次。)

三、CSL活性計(jì)算

(1) 按樣本蛋白濃度計(jì)算

單位的定義:37℃,每mg組織蛋白每分鐘催化產(chǎn)生1μmol *酸定義為一個(gè)酶活力單位。

CSL活性(U/mg prot=?A測定×C標(biāo)準(zhǔn)÷?A標(biāo)準(zhǔn)×V÷V×Cpr÷T×F=0.0208×?A測定÷?A標(biāo)準(zhǔn)÷Cpr ×F

(2) 按樣本質(zhì)量計(jì)算

單位的定義:37℃,每g組織每分鐘催化產(chǎn)生1μmol *酸定義為一個(gè)酶活力單位。

CSL活性(U/g 質(zhì)量)=?A測定×C標(biāo)準(zhǔn)÷?A標(biāo)準(zhǔn)×V÷V÷V樣總×W÷T×F=0.0208×?A測定÷?A標(biāo)準(zhǔn)÷W×F

(3) 按血清(漿)等液體體積計(jì)算

單位的定義:每mL血清(漿)等液體每分鐘催化產(chǎn)生1μmol *酸定義為一個(gè)酶活力單位。

CSL活性(U/mL=?A測定×C標(biāo)準(zhǔn)÷?A標(biāo)準(zhǔn)×V÷V÷T×F=0.0208×?A測定÷?A標(biāo)準(zhǔn)×F

C標(biāo)準(zhǔn)*酸鈉標(biāo)準(zhǔn)液的濃度,0.625μmol/mLV:反應(yīng)體系中加入的樣本體積,0.02mLV樣總:加入的提取液體積,1mL;T:反應(yīng)時(shí)間,30minCpr:蛋白質(zhì)濃度,mg/mLW:樣本質(zhì)量,g;F:樣本稀釋倍數(shù)。

注意事項(xiàng):

1. 如果測定結(jié)果?A測定1,可以對(duì)樣本用蒸餾水進(jìn)行稀釋或者縮短第一步反應(yīng)時(shí)間;吸光值較小,可以加大樣本量或者延長第一步反應(yīng)時(shí)間至1h或者更長時(shí)間。注意計(jì)算時(shí)同步修改計(jì)算公式。

2. 對(duì)于初次測定樣本,建議將樣本勻漿液用蒸餾水進(jìn)行梯度稀釋后測定,選取最佳的稀釋倍數(shù)。洋蔥、香菇、大蒜類樣本建議直接稀釋4-10倍后再進(jìn)行最佳稀釋倍數(shù)摸索。(實(shí)驗(yàn)室洋蔥進(jìn)行了8倍稀釋,蒜進(jìn)行了64倍稀釋)

實(shí)驗(yàn)實(shí)例:

1、 稱取0.1233g蒜樣本,加入提取液進(jìn)行冰浴勻漿,上清用蒸餾水稀釋64倍,按照測定步驟操作,用96孔板測得計(jì)算?A測定=A測定-A對(duì)照=0.46-0.113=0.347?A標(biāo)準(zhǔn)=A標(biāo)準(zhǔn)-A標(biāo)準(zhǔn)空白=0.551-0.064=0.487,帶入公式計(jì)算:

CSL活性(U/g 質(zhì)量)= 0.0208×?A測定÷?A標(biāo)準(zhǔn)÷W×F=7.693 U/g 質(zhì)量。

2、 稱取0.1263g洋蔥樣本,加入提取液進(jìn)行冰浴勻漿,上清稀釋4倍,按照測定步驟操作,用96孔板測得計(jì)算?A測定=A測定-A對(duì)照=0.477-0.382=0.095,?A標(biāo)準(zhǔn)=A標(biāo)準(zhǔn)-A標(biāo)準(zhǔn)空白=0.551-0.056=0.487帶入公式計(jì)算:

CSL活性(U/g 質(zhì)量)= 0.0208×?A測定÷?A標(biāo)準(zhǔn)÷W×F=0.169 U/g 質(zhì)量。

參考文獻(xiàn):

[1] Su Qianqian, Tang Jing, Zhao Liyan, et al. Effects of nanocomposite packaging on the quality and formaldehyde content of shiitake mushrooms during storage [J]. Food Science, 2015(8):6.

[2] Kumagai H, ?Hidetoshi KONO, Sakurai H, et al. Comparison of C-S Lyase in Lentinus edodes and Allium sativum [J]. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry, 2022(66): 2560–2566.

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