糖原PAS染色液（細胞） G1360

糖原染色是病理學中常規(guī)的染色方法之一，McManus在1946年使用高碘酸-雪夫技術顯示黏蛋白，該法常用來顯示糖原和其他多糖，該技術不僅能顯示糖原，還能顯示中性黏液性物質和某些酸性物質以及軟骨、垂體、霉菌、真菌、色素、淀粉樣物質、基底膜等。過碘酸(又稱高碘酸)是一種強氧化劑，它能氧化糖類及有關物質中的1，2-乙二醇基，使之變?yōu)槎?，醛與Schiff試劑能結合成一種品紅化合物，產(chǎn)生紫紅色。由于高碘酸還可氧化細胞內(nèi)其他物質，使用時應注意選擇好高碘酸濃度和氧化時間，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不于過氧化，這是很關鍵的步驟。
糖原PAS染色液（細胞） G1360利用真菌含有多糖，過碘酸氧化真菌壁上的多糖而暴露出醛基，醛基與無色Schiff結合呈現(xiàn)紅色。該染色法性能穩(wěn)定，特異性強；操作簡捷，僅需0.5h；濃度低過碘酸更適用于對真菌染色，無鹽酸乙醇分化液分化步驟。

產(chǎn)品簡介：
糖原染色是病理學中常規(guī)的染色方法之一，McManus 在 1946 年使用高碘酸-雪夫技術顯示黏蛋白，該法常用來顯示糖原和其他多糖，該技術不僅能顯示糖原，還能顯示中性黏液性物質和某些酸性物質以及軟骨、垂體、霉菌、真菌、色素、淀粉樣物質、基底膜等。氧化劑能氧化糖類及有關物質中的 1，2-乙二醇基，使之變?yōu)槎┡c Schiff 試劑能結合成一種品紅化合物，產(chǎn)生紫紅色。由于氧化劑還可氧化細胞內(nèi)其他物質，使用時應注意選擇好氧化劑的濃度和氧化時間，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不于過氧化，這是很關鍵的步驟。糖原 PAS 染色液(細胞)大大增強了染色效果；性能穩(wěn)定，特異性強；操作簡捷，僅需 1h; 氧化劑、蘇木素濃度更低，更適用于細胞、超薄組織切片染色；無鹽酸乙醇分化步驟。該試劑盒僅適用于科研領域。

操作步驟(僅供參考)：
1、細胞、骨髓涂片用PAS固定液固定10～15min。
2、水洗、晾干。
3、入氧化劑，室溫氧化15-20min。
4、自來水沖洗2次，蒸餾水浸洗2次。
5、入Schiff Reagent并加蓋，置于室溫陰暗處浸染10～20min。
6、亞*溶液滴洗2次，每次2min。該步驟亦可省略。
7、流水沖洗 2min。
8、入Mayer蘇木素染色液，復染1～2min。水洗、晾干、鏡檢。

染色結果：
PAS反應陽性物質(糖原或多糖) 紅色或紫紅色
細胞核 藍色
細胞質 深淺不一的紅色
備注：顏色深淺很大程度上取決于樣品在氧化劑和Schiff Reagent中作用時間的長短。

陰性對照(可選)：
1、取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100ml，處理30～60min，與其他樣本共同入氧化劑。結果應為陰性。
2、(備選方案)取唾液片(過濾后用)處理30～60min，與其他樣本共同入氧化劑。結果應為陰性。
3、(備選方案)如果對照片采用其自身樣本，對照片不經(jīng)氧化劑這一步，直接入Schiff Reagent。結果應為陰性。

注意事項：
1、氧化劑氧化時間不宜過久，氧化時的溫度以18～22℃。
2、氧化劑、Schiff Reagent使用時避免接觸過多的陽光和空氣，使用前提前30min取出恢復室溫，避光暗處使用。
3、氧化劑和Schiff Reagent中作用時間非常重要，該依據(jù)切片厚薄、細胞或組織的類別等決定。
4、如常規(guī)切片建議用糖原PAS染色液，因為其氧化劑和蘇木素溶液濃度都相對高。
5、為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。

相關文獻：

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